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Stuhlproben-Lagerung: Haltbarkeitsfristen nach Konservierungsmethode

Die Integrität von Stuhlproben ist stark zeit- und temperaturabhängig. Richtige Entnahme, Transport und Lagerung sind entscheidend für genaue Mikrobiologie-, Parasitologie- und Molekularbiologie-Ergebnisse.

Maximale Aufbewahrungszeiten nach Lagerungsbedingung

Bedingung	Temperatur	Lebensfähigkeitsfenster	Geeignete Tests	Ungeeignete Tests
Zimmertemperatur	20–25 °C	≤ 2 Stunden (ideal < 1 Std.)	Eingeschränkt: C. difficile-Toxin (einige Kits), schneller Antigentest	Kultur, O&P, PCR, Fett im Stuhl, Elastase, Calprotectin
Gekühlt	2–8 °C	24–72 Stunden (optimal ≤ 24 h)	Kultur (bakteriell), O&P, C. diff-Toxin/PCR, okkultes Blut, Stuhlleukozyten, Calprotectin, Elastase	Einige Viren, anspruchsvolle Organismen (Campylobacter-Lebensfähigkeit sinkt)
Gefroren	≤ -20 °C (bevorzugt -70/-80 °C)	Monate bis Jahre	PCR/molekular, viraler Antigen, Mikrobiom, Metabolom, Calprotectin (stabil)	Kultur (Organismen sterben), O&P (Morphologie zerstört), okkultes Blut (Hämoglobin baut sich ab)
Konservierungsmittel (Cary-Blair, ParaPak, SAF, 10 % Formalin, PVA)	Zimmertemperatur (gemäß Kit)	Tage bis Wochen (kit-spezifisch)	O&P (Cary-Blair, SAF, PVA), Kultur (Cary-Blair), PCR (die meisten)	Formalin: keine Kultur, kein Antigen; PVA: keine Kultur

Testspezifische Anforderungen

Bakterienkultur (Salmonella, Shigella, Campylobacter, E. coli O157, Yersinia): Cary-Blair-Transportmedium; Verarbeitung ≤ 48 h gekühlt. Campylobacter: ≤ 24 h, mikroaerophil.
Eier & Parasiten (O&P): SAF (Natriumacetat-Essigsäure-Formalin) oder PVA (Polyvinylalkohol) – bewahrt Morphologie Wochen. Unkonserviert: ≤ 1 Std. für Trophozoiten.
C. difficile: Unkonserviert gekühlt ≤ 24 h (Toxin EIA); PCR stabil gefroren Wochen.
Virale PCR (Norovirus, Rotavirus, Adenovirus): Gefroren -70 °C bevorzugt; gekühlt ≤ 72 h.
Stuhl-Fett (72-Stunden-quantitativ): Gekühlt während der gesamten Sammelzeit; kein Konservierungsmittel.
Calprotectin / Elastase: Gekühlt ≤ 72 h; gefroren stabil Monate.
Mikrobiom / Metagenomik: Sofort gefroren -80 °C (OMNIgene•GUT, RNAlater-Alternativen bei RT).

Best Practices bei der Entnahme

Sauberen, trockenen, breitmundigen Behälter verwenden (keine Urinkontamination).
1/3–1/2 für fest füllen; flüssig – voller Behälter.
Beschriften: Patienten-ID, Datum/Uhrzeit, bestellte Test(e).
Sofort ins Labor transportieren; bei Verzögerung kühlen (nicht einfrieren, es sei denn, es wird angewiesen).
Für O&P: 3 Proben an wechselnden Tagen einreichen (erhöht Sensibilität um 90 %+).

Häufige Fehler, die Ergebnisse ungültig machen

Urinkontamination (verdünnt, verändert pH-Wert, hemmt Kultur).
Übermäßige Verzögerung bei Zimmertemperatur → Überwuchs von Kolibakterien, Absterben von Pathogenen.
Einfrieren unkonservierter Probe für Kultur/O&P.
Falsches Konservierungsmittel für bestellten Test.
Unzureichendes Volumen.

Goldene Regel: Frisch ist am besten. Innerhalb von 2 Stunden verarbeiten oder geeignetes Transportmedium verwenden. Mit dem Labor für spezifische Anforderungen kommunizieren.

Referenz: ASM/CLSI M40-A2, CDC DPDx, CAP Microbiology Checklist. Laborspezifische SOPs überschreiben allgemeine Richtlinien.

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